MAT法熱原檢測中，ELISA 加終止液后的讀數(shù)時間需嚴格控制，以保障 IL-6 檢測信號穩(wěn)定。湖州申科生物MAT試劑盒說明書明確要求，終止液添加后需在 10 分鐘內完成讀數(shù)，且需避光操作 —— 原因在于，終止液（如硫酸）會終止 TMB 顯色反應，但生成的黃色產物在光照下易降解，超過 10 分鐘后 OD 值會下降，導致 IL-6 檢測值偏低。讀數(shù)前需進行 30 秒震蕩混勻，確?？變纫后w濃度均勻，避免因局部濃度差異導致復孔 OD 值波動。酶標儀波長需設置為 450nm，若儀器含 600nm 參考波長，可同時檢測 600nm 波長以扣除背景干擾（如細胞碎片導致的光散射），提升檢測準確性。需注意的是，讀數(shù)時不可覆蓋封板膜或蓋子，避免膜上凝結的水蒸氣滴入孔中，導致 OD 值異常升高。若因儀器故障無法及時讀數(shù)，需將微孔板密封后置于 4℃避光保存，并在 30 分鐘內完成讀數(shù)，同時在記錄中注明延遲原因，評估延遲對結果的影響（如延遲 20 分鐘，OD 值可能下降 15%，需校正后使用）。 MAT 法通過熱原活化單核細胞 TLR 受體，釋放 IL-6 等細胞因子，ELISA 檢測 IL-6 推算熱原含量。北京重組蛋白熱原檢測體系

在 MAT 法熱原檢測中，PBMC（外周血單核細胞）與單核細胞系各有優(yōu)劣，單核細胞系更適合標準化檢測。PBMC 的優(yōu)勢在于免疫細胞成分豐富（含單核細胞、淋巴細胞等），對熱原反應敏感，靈敏度相對較高；但局限同樣明顯 ——PBMC 需從不同供體獲取，供體免疫狀態(tài)差異會導致檢測結果不穩(wěn)定，且無法長期保存，難以建立標準化方法學。單核細胞系（如 HL-60、MM6、THP1）則克服了 PBMC 的局限：細胞來源穩(wěn)定（可批量培養(yǎng)），TLR 受體表達覆蓋主要亞型（如 HL-60 表達 TLR1-TLR9），對熱原反應重復性好，更適合商業(yè)化試劑盒與法規(guī)檢測。不同單核細胞系性能也有差異：MM6/IL-6 法檢測限約 0.05EU/mL，THP1/TNF-α 法因 TNF-α 為一級免疫效應物檢測限更低，但 TNF-α 穩(wěn)定性差；HL-60/IL-6 法檢測限與穩(wěn)定性均優(yōu)于前兩者，成為主流選擇。湖州申科生物MAT試劑盒選用 HL-60 細胞系，正是基于其優(yōu)異的穩(wěn)定性與熱原響應適配多場景，確保不同批次檢測結果一致。 北京重組蛋白熱原檢測體系在藥品**語境中，熱原特指細菌性熱原—微生物代謝產物、細菌尸體及內毒素的統(tǒng)稱。

傳統(tǒng)熱原檢測方法的局限性十分明顯：鱟試驗法只能特異性識別細菌內毒素，對非內毒素熱原完全無響應；家兔熱原試驗雖能篩查全類型熱原，但靈敏度低（檢測限≥5EU/kg），無法檢出微量非內毒素熱原，且無法區(qū)分熱原類型，難以追溯污染源頭；單核細胞活化反應測定（MAT）的出現(xiàn)有效解決了上述難題，其關鍵優(yōu)勢在于：基于人源單核細胞的免疫應答機制，可同時識別所有具備生物活性的熱原（包括內毒素與非內毒素），且檢測靈敏度高（對病毒熱原檢測限低至pg級）；檢測周期短（24-48小時），可滿足產品快速放行需求；能通過細胞因子濃度定量評估熱原活性，避免“無活性熱原”的誤判。

隨著發(fā)熱反應分子機制研究的不斷深化，單核細胞活化試驗（MAT）作為一種體外熱原檢測技術，愈發(fā)受到醫(yī)藥與**器械行業(yè)的關注并逐步推廣應用。該方法的原理是：讓人體全血與待檢樣品中的熱原充分接觸后，通過檢測體系中產生的 IL-1β、IL-6（因穩(wěn)定性強、重復性優(yōu)，常作為關鍵檢測指標）、TNF 等促炎細胞因子含量，實現(xiàn)對熱原污染程度的評估，整個過程能高度模擬人體先天免疫系統(tǒng)對熱原的應答反應。相較于傳統(tǒng)熱原檢測手段，MAT 的優(yōu)勢更為突出：不僅可檢出各類熱原污染物，包括尚未明確性質的未知熱原，以及革蘭氏陽性菌（脂磷壁酸）、真菌、病毒等產生的非內毒素熱原，**了傳統(tǒng)內毒素檢測（如鱟試劑法）的覆蓋空白。此外，MAT 無需使用實驗動物，契合全球 “替代、減少、優(yōu)化”（3R 原則）的監(jiān)管導向，目前已被《歐洲藥典》等法規(guī)列為家兔熱原試驗的替代方法，進一步提升了其在合規(guī)檢測中的適用性。 單核細胞系傳代可控，20代以內TLR表達與炎癥因子分泌保持穩(wěn)定，確保熱原響應一致性。

湖州申科生物MAT試劑盒配套的即用型細胞，需嚴格遵循解凍與使用規(guī)范，避免細胞活性下降影響熱原檢測結果。首先，解凍操作需快速：從液氮罐或 - 80℃冰箱取出細胞后，立即放入 37℃水浴鍋快速解凍（約 1-2 分鐘），避免緩慢解凍導致細胞內形成冰晶，損傷細胞膜；解凍后需立即取出，用 75% 酒精擦拭管外壁消毒，防止污染。其次，細胞解凍后需一次性使用完畢，不建議按量添加培養(yǎng)基或添加劑后分次使用—即用型細胞經工藝優(yōu)化，活性與濃度已預調，分次使用會導致細胞狀態(tài)不均（如部分細胞活化、部分休眠），影響熱原反應性。使用時需嚴格按說明書操作：將解凍后的細胞直接加入含樣品的微孔板中，無需額外洗滌或稀釋，若樣品為高濃度基質，可提前用無熱原培養(yǎng)基稀釋樣品（不超 MVD），但細胞不可稀釋。此外，解凍后的細胞需在 30 分鐘內完成加樣，避免室溫放置過久導致細胞活性下降，若無法及時加樣，需置于 37℃培養(yǎng)箱暫存，但不超過 1 小時，確保細胞用于熱原檢測時處于較好的活性狀態(tài)。 基于人體免疫機制的 MAT 熱原檢測，為熱原檢測提供了新的可靠途徑。江蘇抗體藥物熱原檢測法規(guī)要求

歐洲藥典通則 2.6.30 明確 MAT 可替代家兔法熱原檢查，能同時檢測內毒素與非內毒素熱原。北京重組蛋白熱原檢測體系

中國藥典對 MAT 法熱原檢測要求 4 復孔，未明確 CV 限值，需結合細胞實驗特性合理解讀與操作。藥典不設 CV 限值的主要原因是：MAT 法基于細胞反應，細胞活性易受環(huán)境微小變化（如溫度、pH）影響，存在天然不穩(wěn)定性，過嚴的 CV 要求可能脫離實際；但實驗室可通過積累多批次數(shù)據(jù)，制定內部 CV 控制范圍（如定量上下限 CV≤30%、25%），確保檢測重復性。關于 3 復孔的適用性：若長期數(shù)據(jù)顯示 CV 控制良好（如連續(xù) 10 批次 CV<20%），且樣品為中間過程檢測（非 QC 放行），可嘗試 3 復孔，但需同步設置加標對照，驗證結果可靠性；若為 QC 放行檢測，仍建議按 4 復孔操作，符合藥典下限要求。對于異常點處理，可采用狄克遜準則（Q 檢驗）等統(tǒng)計學方法 —— 如某復孔 IL-6 檢測值偏離平均值 30% 以上，且無明顯操作誤差（如加樣錯誤），可判定為異常點并剔除，但需在原始記錄中詳細說明原因，確保數(shù)據(jù)可追溯，避免隨意剔除導致結果失真。 北京重組蛋白熱原檢測體系